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InGex.com是Ingex有限責任公司的所在地，也是TGIRT™-III獨立酶和TGIRT™模板切換RNA-seq試劑盒的*授權銷售商。

TGIRT模板互轉RNA測序擴增試劑盒(TGIRTKit25)

說明書

轉換原理圖

1.1.本試劑盒包含:

本試劑盒適用于Illumina RNA-seq分析中的模板轉換反應，包括預混修飾的RNA/DNA異源雙鏈寡核苷酸的TGIRT^®-III酶，DTT及反應緩沖液。本試劑盒可用于以RNA為模板合成5'端帶RNA-seq接頭的cDNA。在用于RNA-seq文庫的構建時，必須在PCR擴增前用熱穩(wěn)定的5'AppDNA/RNA連接酶 (New England BioLabs; M0319S or M0319L)在cDNA的3'端引入另一個RNA接頭（可單獨購買）

1.2.TGIRT®-III酶的特性：

該酶比逆轉錄酶具有更好的熱穩(wěn)定性、持續(xù)合成能力和保真性，可以實現(xiàn)從復雜結構或高度修飾的RNA進行全長、末端到末端的cDNA合成^{1，4,5,6,7,8}。

*的末端到末端模板轉換活性可以實現(xiàn)在逆轉錄過程中添加RNA-seq或PCR接頭，并且無需單獨在RNA 3'連接接頭。模板轉換活性大大便利了鏈特異RNA-seq文庫的構建，比用隨機單鏈六聚體引物或使用RNA 連接酶進行接頭連接的方法有更好的保真性^{1,4,7, 8}。

1.3.TGIRT®-III酶適用于：

1.各種鏈特異轉錄組分析。

2.全細胞、外泌體、血漿/細胞質及其它無細胞RNA樣品的RNA-seq。

3.miRNA和其它小分子非編碼RNA的分析。

4.RIP-seq, HITS-CLIP, CRAC, 核糖體分析。

1.4.TGIRTKit25的優(yōu)勢：

1.更*的轉錄分析能力及無偏差分析。

研究表明，去核糖體RNA、片段化通用人類標準RNA參照樣本的TGIRT®-seq測序兼具人類轉錄本相對豐度和人工合成mRNA的眾多優(yōu)點，與非鏈特異性TruSeq v2測序相當，比鏈特異性Tru-Seq v3更具優(yōu)勢。TGIRT®-seq在鏈特異性上明顯優(yōu)于Tru-Seq v3，但卻沒有TruSeq v3測序固有的源于隨機引物的樣本偏差。同時，TGIRT®-seq表現(xiàn)出更均一的5’端到3’端基因覆蓋以及鑒定更多的剪切位點，還可同時在同一次RNA測序中分析mRNAs、lncRNAs和小分子非編碼RNA，包括在TruSeq中通常無法分析的tRNA⁸。

2.可對全細胞、外泌體、血漿/細胞漿等其它胞外RNA進行測序分析。

快速（全程小于5小時，包括RNA文庫構建及PCR步驟），樣本需要量極少（納克級），*的轉錄組分析能力，包括 mRNAs、lncRNAs以及其它小分子非編碼ncRNAs，如全長tRNAs和 pre-miRNAs等，較常規(guī)RNA測序分析具有更小的偏差^7,8。

3.比常規(guī)的逆轉錄RT有更*的持續(xù)合成能力和鏈置換能力。

*的持續(xù)合成能力和鏈置換能力可實現(xiàn)全長的、末端到末端的tRNAs及其它小分子非編碼RNA的cDNAs，這是常規(guī)逆轉錄RT無法實現(xiàn)的^4-7。

4.利用TGIRT®模板轉換法構建RNA測序文庫可用于miRNA，RIP-seq, HITS-CLIP, CRAC, 核糖體測序分析。

快速便捷（全程小于5小時，包括RNA文庫構建及PCR步驟），僅需少量樣本（納克級），無需RNA連接酶，無偏差。

1.5.參考文獻:

1.Mohr, S., Ghanem, E., Smith, W., Sheeter, D., Qin, Y., King, O., Polioudakis, D., Iyer, V.R., Hunicke-Smith, S. Swamy, S., Kuersten, S., and Lambowitz, A.M. Thermostable group II intron reverse transcriptase fusion proteins and their use in cDNA synthesis and next-generation RNA sequencing. RNA 19, 958-970, 2013.

2.Collins, K. and Nilsen, T. Enzyme engineering through evolution: thermostable recombinant group II intron reverse transcriptases provide new tools for RNA research and biotechnology. RNA 19, 1017-1018, 2013.

3.Enyeart, P.J., Mohr, G., Ellington, A.D., and Lambowitz A.M. Biotechnological applications of group II introns and their reverse transcriptases: gene targeting, RNA-seq, and non-coding RNA analysis. DNA 5:2, 2014.

4.Katibah, G.E., Qin, Y., Sidote, D.J., Yao, J., Lambowitz, A.M. and Collins, K. Broad and adaptable RNA structure recognition by the human interferon-induced tetratricopeptide repeat protein IFIT5. Proc. Natl. Acad. Sci., USA, 111, 12025-12030, 2014.  

5.Shen, P.S., Park, J., Qin, Y., Li, X., Parsawar, K., Larson, M.H., Cox, J., Chen, Y., Lambowitz, A.M., Weissman, J.S., Brandman, O., and Frost, A. Rqc2p and 60S ribosomal subunits mediate mRNA-independent elongation of nascent chains. Science 347, 75-78, 2015.

6.Zheng, G., Qin, Q., Clark, W.C., Yi, C., He, C., and Lambowitz, A.M. and Pan, T. Efficient and quantitative high-throughput transfer RNA sequencing. Nature Methods, 12, 835-837, 2015.

7.Qin,Y., Yao,J., Wu,D., Nottingham, R., Mohr, S, Hunicke-Smith, S., Lambowitz, A.M., High-throughput sequencing of human plasma RNA by using thermostable group II intron reverse transcriptases. RNA 22, 111-128, 2016.

8.Nottingham, R.M., Wu, D.C., Qin, Y., Yao, J., Hunicke-Smith, S., and Lambowitz, A.M. RNA-seq of human reference RNA samples using a thermostable group II intron reverse transcriptase. RNA, 22, 597-613, 2016.

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